Меню

Плевроцентез у собак техника

Торакоцентез

(с) Ветеринарный центр лечения и реабилитации животных «Зоостатус».

Варшавское шоссе, 125 стр.1.

Торакоцентез – лечебная процедура, позволяющая удалить жидкость или воздух из плевральной полости.

Прокол грудной клетки осуществляется с помощью катетера или иглы. Дальнейшее удаление жидкости происходит либо самотеком (большой объем), либо ее откачивают с помощью шприца. Удаление воздуха проводится шприцем.

Плевра – это гладкая серозная оболочка, окружающая ткань легких и средостение. Состоит из 2 листков, между которыми находится щелевидное пространство, в норме заполненное небольшим количеством жидкости. Жидкость препятствует трению плевральных листков друг о друга, а также, благодаря формированию поверхностного натяжения, удерживает легкие в расправленном состоянии. Отрицательное давление в грудной клетке также позволяет легким сохранять форму, поэтому наличие свободного воздуха в плевре недопустимо.

Жидкость вырабатывается капиллярами межреберных артерий и всасывается назад лимфатической системой.

Скопление избыточного количества жидкости возможно по причине ее избыточного образования, либо нарушения всасывания (нарушение лимфооттока).

Наиболее частой причиной появления свободного воздуха в плевральной полости является травма.

Показания к проведению торакоцентеза

Показания к проведению торакоцентеза:

  • Удаление жидкости/воздуха из грудной клетки.
  • Взятие свободной жидкости на анализ.
  • Необходимость улучшить рентгенографические снимки.

Техника проведения торакоцентеза

Торакоцентез проводится, когда пациент стоит, или лежит на груди. Игла вводится в середине подходящего межреберного пространства (по заднему краю каждого ребра расположены нервы, кровеносные сосуды) под углом 45градусов по отношению к расположению плеврального листка. Важно следить, чтобы легочная ткань не закупорила просвет иглы.

Анализ жидкости включает в себя подсчет лейкоцитов, эритроцитов, цитологический анализ клеток (выявление опухолевых клеток), определение концентрации белка, бактериологический анализ (исключение инфекции), а также биохимический анализ (триглицериды, холестерол).

По типу жидкости различают:

  • транссудат (низкое содержание белка в крови, сердечная недостаточность);
  • модифицированный транссудат (сердечная недостаточность, сдавление плевральных вен опухолевой массой);
  • хилезная жидкость (разрыв грудного лимфатического протока, сердечная недостаточность кошек, опухоль);
  • геморрагическая жидкость (опухоль, травма);
  • септический экссудат (инфекция, инородное тело, травма);
  • несептический экссудат (опухоль, вирусный перитонит кошек, паразитарное поражение);
  • неопластический экссудат (опухоль).

В клинической практике торакоцентез проводится как для стабилизации пациентов, поступающих с тяжелой дыхательной недостаточностью (большое количество жидкости или воздуха в грудной клетке препятствует свободному расправлению легких), так и с диагностической целью. Например, даже если объем жидкости небольшой, полученный образец можно исследовать в лаборатории и подтвердить диагноз «новообразование грудной клетки», «бактериальная инфекция» или «вирусный перитонит кошек».

Почитайте отзывы о нашем ветеринарном центре.
Позвоните по номеру 8 (499) 372 00 57 и запишитесь на консультацию прямо сейчас или закажите обратный звонок.
(с) Ветеринарный центр лечения и реабилитации животных «Зooстатус».
Варшавское шоссе, 125 стр.1.

Источник

Диагностика при синдроме свободной жидкости в плевральных полостях у кошек

Введение

Анатомия, физиология и патофизиология

Причины увеличения скорости образования плевральной жидкости:

  • повышенное гидростатическое давление в кровеносных сосудах (сердечная недостаточность, тампонада сердца, обструкция сосудов);
  • пониженное онкотическое давление (снижение альбумина при энтеропатиях, гепатопатиях, хронических кровотечениях в ЖКТ);
  • увеличенная порозность сосудов (васкулит, системное воспаление, панкреатит, инфекции, аллергические реакции, опухоли);
  • отрицательное давление в плевральной полости (после хирургических вмешательств, при фиброзе плевры).

Причины уменьшения скорости всасывания плевральной жидкости:

  • повышенное давление в лимфатических сосудах (повышение давления в правом предсердии, артериовенозные фистулы, обструкция лимфатических сосудов);
  • снижение проницаемости плевры (фиброз).

Истечение жидкости может происходить из поврежденного кровеносного сосуда, из опухоли, из поврежденного лимфатического сосуда.

Плевральный выпот – это не болезнь, а синдром, который может проявляться при различных болезнях по разным причинам, при этом несколько причин могут сочетаться.

Клинические признаки

Дыхательную недостаточность можно оценить по частоте дыхательных движений в покое за 1 минуту (менее 24 – это норма, а более 27 – дыхательная недостаточность). Данные показатели могут быть использованы владельцами животных для мониторирования изменений состояния их питомца при лечении.

Дыхательная недостаточность – это неотложное состояние! Важно определить признаки дыхательной недостаточности как можно быстрее при поступлении кошки в клинику.

Лучше всего подготовиться к появлению такого пациента заранее, например после телефонного звонка хозяев кошки или предупреждения администратора клиники о поступившем экстренном пациенте. Все манипуляции с таким животным нужно совершать, не забывая о его крайне нестабильном состоянии! В любой момент любое действие с кошкой может спровоцировать ухудшение ее состояния и привести к смерти. Типичные провоцирующие факторы: душное помещение, вынужденное соседство с другими животными, стресс (при извлечении животного из переноски, при виде доктора, при осмотре), смена положения тела, болезненные манипуляции.

Тоны сердца и легочные звуки в вентральной части грудной клетки приглушены. Границы приглушения зависят от количества жидкости в плевральных полостях.

Перкуссия
Лучше всего, если кошка находится в стоячем положении. Перкутировать нужно в области нескольких межреберьев, на нескольких уровнях (от позвоночника к грудине или наоборот) (рис. 3). Наличие жидкости приглушает, притупляет перкуторный звук. Поскольку жидкость занимает нижележащие отделы плевральных полостей, часто удается определить горизонтальную границу приглушения звука (по сути – уровень жидкости). При одностороннем скоплении жидкости притупление перкуторного звука выявляется с соответствующей стороны.

Рентгенография при поступлении
Кошка с выраженной дыхательной недостаточностью может умереть при попытке уложить ее в боковое положение или в положение на спине. Поэтому в случаях выраженной дыхательной недостаточности и при подозрении на свободную жидкость в плевральных полостях (по результатам осмотра, аускультации и перкуссии) во многих руководствах рекомендуется делать рентгенографию только после торакоцентеза, аспирации жидкости и стабилизации животного.
Возможно, стоит ограничиться снимком в том положении, в котором кошке проще дышать. Если она лежит в положении на животе, значит, стараясь не напугать животное и не заставляя ее занимать положение для получения идеальной укладки, следует сделать снимок в дорсовентральной проекции. Смысл снимка при поступлении пациента – подтвердить наличие свободной жидкости в плевральных полостях. Озадачиться поиском других симптомов можно будет после того, как жидкость будет аспирирована и кошка начнет нормально дышать.

Рентгенография после аспирации жидкости
Крайне сложно аспирировать всю плевральную жидкость полностью. Как правило, этого не требуется, поскольку остаток жидкости объемом 40–50 мл практически не приводит к дыхательной недостаточности. Считается, что при рентгенографии грудной клетки средней кошки можно уверенно диагностировать свободную жидкость в плевральных полостях, если ее объем больше 50 мл.
Анализируя полученные рентгенограммы, нужно учитывать положение животного во время снимка и то, что свободная жидкость под действием силы тяжести смещается в нижние отделы плевральных полостей, тогда как наполненные газом легкие «всплывают» вверх.

Небольшое количество свободной жидкости в плевральных полостях проявляется заполнением междолевых вырезок легких (фото 3). Места расположения междолевых вырезок зависят от укладки животного при рентгенографии (рис. 4).

Есть вероятность того, что даже после хорошо выполненной аспирации жидкости рентгенография не покажет ничего, кроме остаточного количества жидкости и ателектазированных участков легких. Однако нередко удается обнаружить признаки опухолевого процесса в средостении, ребрах, легких (фото 4)
Помимо поиска патологических изменений, рентгенография после торакоцентеза необходима еще по двум причинам:
1) для оценки остаточного количества жидкости (что может быть полезно при отслеживании динамики накопления жидкости, фото 5);
2) для контроля отсутствия свободного газа в плевральных полостях, который мог появиться там после торакоцентеза.
Полезными иногда могут оказаться рентгенограммы в разных положениях в горизонтальном луче, т.к. жидкость стекает вниз и при снимке в горизонтальном луче перестает закрывать расположенные выше участки легких и средостения, однако, к сожалению, не все рентгеновские аппараты позволяют делать такие снимки.
Массы в средостении могут быть ошибочно приняты за свободную жидкость в плевральных полостях (фото 6).

Видео 1. Флотация доли легкого при наличии свободной жидкости в грудной полости. Кошка с хилезным содержимым в грудной полости, на видео хорошо видно движение доли легкого с нарушенной воздушностью.

В норме при ультразвуковом исследовании грудной клетки такие мягкие ткани, как кожа, подкожный жир и мышцы, визуализируются в виде слоистых структур различной эхогенности. Ребра визуализируются как гиперэхогенные структуры с гладкой поверхностью и интенсивной акустической тенью. Прослойка жидкости визуализируется в В-режиме при использовании высокочастотного линейного датчика. Мы видим такие эффекты, как скольжение легкого (англ. lung sliding; скольжение висцеральной плевры) и А-линии.
При наличии плеврального выпота наблюдается анэхогенное или эхогенное содержимое, отделяющее легкие от грудной стенки (фото 10). В зависимости от эхогенности жидкости можно предположить ее характер. Транссудат, модифицированный транссудат и лимфа, как правило, гипо- или анэхогенны. При кровотечении и экссудате выпот более эхогенный. Белок и фибрин могут свободно флотировать в жидкости или присоединяться к органам и тканям средостения и имитировать новообразования. Данные включения не всегда поддаются цветному доплеровскому картированию и требуют дальнейшего наблюдения. При хроническом плевральном выпоте могут визуализироваться нити фибрина и спайки, представляющие собой гиперэхогенные подвижные тяжи. При подозрении на наличие карманов с жидкостью исследование надо проводить в разных положениях животного.
В М-режиме плевральный выпот в малом количестве может визуализироваться как (так называемый) синусоидальный признак – легкое, находящееся под слоем жидкости в М-режиме, движется в такт дыханию, вследствие чего на сонограмме визуализируются «гиперэхогенные холмы на темном фоне» (фото 11).

Под контролем УЗИ можно делать торакоцентез и аспирировать жидкость (фото 12).
Торакоцентез – это пункция плевральной полости с диагностической (взятие образца жидкости для лабораторной диагностики) и терапевтической (устранение причины дыхательной недостаточности) целями. Техника торакоцентеза подробно описана в «конспекте».

Лабораторное исследование жидкости
Жидкость, полученную при аспирации, можно разделить на несколько основных типов. Установление типа жидкости позволяет сделать выводы о причине ее образования (таблица типов плевральной жидкости приведена в «конспекте»). Не всегда тип жидкости можно однозначно классифицировать. Тип жидкости может изменяться с развитием болезни.

Читайте также:  Если собаку укусила бешеная кошка что будет

Компьютерная томография
Этот метод во многих случаях позволяет выявить причины появления жидкости. При КТ (в отличие от рентгенографии) жидкость, имеющаяся в плевральных полостях, не является препятствием для диагностики.
С помощью КТ можно визуализировать объемные образования легких, плевры, средостения.
КТ-ангиография дает возможность исследовать магистральные и легочные сосуды. Это необходимо при подозрении на тромбоэмболию легочных артерий, заворот доли легкого и обструкцию краниальной или каудальной полой вены (фото 13, видео 2).
КТ-лимфография позволяет исследовать грудной лимфатический проток.
Во время КТ-исследования можно провести биопсию интересующих объектов с поэтапным введением иглы и КТ-контролем ее положения.

Видео 2. КТ-ангиография кошки с хилотораксом.

Торакоскопия и торакотомия
Проводится чаще с лечебной целью или с диагностической — при необходимости взятия материала для гистологического исследования под визуальным контролем (плевра, часть легкого) или для ревизии плевральных полостей, если другие способы не позволили поставить диагноз.

Источник



Ветеринарная клиника доктора Шубина

г. Балаково, ул. Трнавская, д 4. тел. +7-987-356-69-05

Вы здесь

Торакоцентез

Определение
Торакоцентез – пункция грудной клетки для эвакуации жидкости и/или воздуха из плевральной полости.

Показания:
• Стабилизация животного при дыхательном дистрессе по причине скопления воздуха и/или жидкости.
• Получение образцов жидкости для диагностических исследований.

Оборудование

Катетер-бабочка
либо
Внутривенный катетер (браунюля):
• 18-20 gage – собаки средних и крупных пород (>10 кг).
• 20-22 gage – кошки и собаки малых пород.

Трех ходовый кран.

Шприцы от 10 до 50 мл в зависимости от ожидаемого объема воздуха или жидкости.

Сосуд для сбора плевральной жидкости.

Подготовка пациента

В зависимости от степени возбудимости и клинического состояния животного – ручное удержание или легкая седация. У животных с дыхательным дистрессом следует предпринимать максимальные предосторожности. Укладка – грудное положение, в качестве альтернативы – сидя или лежа на боку. Поле готовится как стерильное место для пункции (выстригание, антисептики). Вероятно использование локальных анестетиков в месте пункции.

Техника

Пункция проводится в 7-м-8-м межреберье, место введения иглы зависит от предполагаемого характера содержимого (выпот или воздух):
• Середина грудной полости, при наличии воздуха и жидкости.
• Вентральная треть грудной полости, при наличии жидкости.
• Дорсальная треть грудной клетки, при наличии воздуха.

Игла вводится вдоль краниального края ребра, направление слегка вентральное (около 45 гр), так что бы фаска иглы была параллельна легким. После провала в грудную полость проводится попытка аспирации шприцом (не более 2 мл). При положительных результатах, проводится откачивание жидкости или воздуха через трех-ходовый кран. Затем проводятся те же манипуляции на противоположной стороне (предпочтительно проводить именно двустороннее дренирование). После процедуры, для оценки успеха дренирования оптимально проводить радиографическое исследование.

Предосторожности:
• Избегать пункции по каудальному краю ребра – места прохождения межреберных сосудов и нервов.
• Избегать пункции сразу над грудиной – вероятна пункция внутренней грудной артерии.

Вероятные осложнения

Не преднамеренная пункция внутренней грудной артерии, межреберных или коронарных сосудов а также миокарда.

Лацерация легких с последующим ятрогенным пневмотораксом.

Фото. Торакоцентез производится в 6-м, 7-м или 8-м межреберном промежутке, рядом с уровнем костно-хрящевого соединения. (источник Small Animal Surgery, Theresa W. Fossum).

Ветеринарная клиника доктора Шубина, г. Балаково

Источник

Технические приемы

Глава 10. ТЕХНИЧЕСКИЕ ПРИЕМЫ, ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ В АНЕСТЕЗИОЛОГИЧЕСКОЙ ПРАКТИКЕ

10.1. Венепункция, венесекция, катетеризация вен и артерий

Внутривенное или внутриартериальное введение лекарственных веществ производится, как правило, при тяжелых или терминальных состояниях животного.

К пункции периферической вены прибегают при кратковременной инфузионной терапии (в течение 2-3 дней) или при одно-двукратном внутривенном введении лекарственных препаратов в небольшом объеме, а также для взятия крови на исследование.

Пункцию периферической вены лучше всего производить на передних конечностях в v.Cephalica, посередине между локтевым и запястным суставами.

Венепункция производится с соблюдением правил асептики и, как правило, не представляет особых трудностей. Особенностями этой манипуляции являются: 1) фиксация вены левой рукой (кожу на лапе снизу берут в складку, чтобы ограничить подвижность вены); 2) после прокола вены иглой последнюю следует продвинуть по просвету вены на 1-2 см, для более надежной фиксации иглы в просвете сосуда.

Более надежной и удобной является венепункция специальной канюлей типа «Vasofix», представляющей собой полиэтиленовый катетер, надетый на иглу После пункции вены игла извлекается, и в просвете вены остается гибкий катетер, который не травмирует стенки сосудов при непредвиденных движениях животного. Этот катетер можно оставить в просвете вены для последующих внутривенных введений лекарственных веществ.

Катетеризацию вены можно осуществить по способу Сельдингера, заключающемся в пункции вены толстой иглой, через просвет которой в вену вводится проводник (металлический или леска), затем игла удаляется, по проводнику в просвет вены вращательными движениями вводится катетер на 4—8 см, а проводник извлекается. В момент извлечения проводника место пункции прижимают стерильным шариком для фиксации катетера. Катетер необходимо фиксировать к коже 2-3-мя прошивными лигатурами.

При невозможности венепункции (паравазальная гематома, отеки, необходимость транспортировки, длительных инфузий, спавшиеся вены при терминальных состояниях: шок, массивная кровопотеря и т п.) прибегают к венесекции. Венесекцию можно осуществить не только на периферических, но и на центральных венах (v.jugularis extema, v.femoralis, v.axillaris). Принципиально техника венесекции одинакова для периферических и центральных вен. Особенности определяются топографоанатомическим расположением того или иного сосуда, выбранного для венесекции.

Рис.21. Этапы венесекции.

Техника (Рис.21): с соблюдением правил асептики готовят участок кожи над выбранной веной (при катетеризации v.jugularis extepna кожу рассекают поперечным разрезом длиной 4-5 см посередине между углом нижней челюсти и плече-лопаточным суставом, или непосредственно за дорзальным краем нижней челюсти, что позволяет ввести катетер в v.jugularis через одну из вен — v.lingualis, v.maxillaris, v.facialis, при катетеризации v. femoralis или v.axillaris — в паховой или подмышечной области, соответственно. При катетеризации vcephalica — посередине между локтевым и запястным суставами). Скальпелем рассекают кожу и тупо (браншами зажима) выделяют вену на протяжении 2-3 см, под которую подводят две кетгутовые лигатуры. Дистальную лигатуру завязывают. Натягивая дистально расположенную лигатуру, подтягивают и выпрямляют вену, и надсекают ее кончиками тонких (глазных или сосудистых) ножниц на 1/5-1/4 ее просвета. В образовавшееся отверстие вводят катетер, наполненный изотоническим раствором натрия хлорида, на расстояние 5—20 см в зависимости от преследуемых задач и диаметра сосуда. Лигатуры перевязывают, фиксируя катетер в просвете сосуда и в ране. Кожу зашивают, привязывая катетер.

При катетеризации центральных вен, после выделения сосуда лучше воспользоваться способом Сельдингера, или, при невозможности этого, — провести катетеризацию центральной вены через любую небольшую веточку, впадающую в центральный сосуд (Рис.22). Соблюдение этих рекомендаций позволяет избежать перевязки центральной вены и связанных с этим осложнений: кровотечения, восходящего тромбоза, отеков соответствующей анатомической области и т.д.

Рис.22. Схема периферических венозных стволов, используемых для катетеризации центральной вены (v.jugulans externa). 1 — external acoustic meatus: 2 — v. temporalis superficialis. 3 — v aunculans caudalis; 4 — v.maxillans. 5 — v. Jiigulans extema. 6 — v.lmgvotacialis. 7 — v.laryngea cranialis. 8 — v.lingvahs. 9 — v.faciahs. 10 — mandibular salivary gland.

Катетеризация центральной вены позволяет более эффективно проводить инфузионную терапию, дольше держать катетер в просвете вены, а катетеризация наружной яремной вены дает возможность вводить лекарственные препараты непосредственно к сердцу, а также измерять центральное венозное давление, что вляется необходимым диагностическим тестом при определении объема инфузионной терапии, темпа вливаний.

Центральное венозное давление (ЦВД) измеряется при помощи аппарата Вальдмана, нулевая отметка которого устанавливается на уровне правого предсердия (Рис.23). Венозный катетер, находящийся в наружной яремной вене, подсоединяют к флеботонометру Вальдмана и следят за колебаниями раствора в трубке манометра, которое должно быть синхронным с фазами дыхания. Верхняя граница колебаний раствора соответствует значению ЦВД. У собак в норме этот показатель колеблется от 20 до 40 мм вод. ст.

Рис.23. Схематическое изображение измерения ЦВД при помощи аппарата Вальдмана.

Снижение этого показателя до 0 и ниже свидетельствует о дефиците ОЦК и возможном развитии коллапса. В этом случае необходимо увеличить темп и объем инфузии. Показатель выше 70 мм вод.ст. может говорить о гиперволемии, слабости правого желудочка сердца, возможности развития отека легких или развитии тромбоэмболии легочной артерии. В этом случае необходимо снизить темп и объем инфузионной терапии, принять меры профилактики и устранения выявленной причины.

При отсутствии флеботонометра Вальдмана, ЦВД можно измерить при помощи обычной системы для переливания крови. Для этого из заполненной системы предварительно сливается небольшое количество жидкости с тем, чтобы можно было установить нулевую отметку в просвете самой системы (Рис.24). Затем система перекрывается, подсоединяется к венозному катетеру, а нулевая отметка устанавливается на уровне правого предсердия. Система открывается и производится учет показателя ЦВД по описанной выше методике.

Рис. 24. Схематическое изображение измерения ЦВД при помощи обычной системы для переливания крови.

Измерение ЦВД можно проводить и в лежачем положении животного. При этом принципы измерения ЦВД не меняется.

Постоянный катетер требует определенного ухода: ежедневный туалет места пункции или раны, через которую выходит катетер, антисептиками и смена повязки; после инфузий через заглушку в просвет катетера вводится так называемый «гепариновый замок» — 4,5 мл изотонического раствора натрия хлорида и 0,5 мл гепарина. В период между инфузиями этот раствор вводится через заглушку каждые 4—6 часов. Необходимо следить за тем, чтобы катетер не заполнялся кровью, т.к. это приводит к его быстрому тромбированию. В этих случаях возможна осторожная реканализация катетера проводником с последующей промывкой его раствором гепарина При надлежащем уходе за катетером возможно его использование на протяжении до 2-х недель.

Читайте также:  Метафора женщина скользнула взглядом по собаке

При катетеризации вен возможны такие осложнения, как тромбэмболия, ранение артерий или нервов, воздушная эмболия, инфекционные осложнения (нагноение, сепсис).

Катетеризацию артерий выполняют четырьмя способами:

  1. чрезкожной пункцией специальным катетером с металлическим проводником;
  2. по Сельдингеру;
  3. пункцией артерии после ее обнажения;
  4. введением катетера через артериотомическое отверстие (как при венесекции).

На технике этой манипуляции более подробно останавливаться не будем, т.к. к ней прибегают достаточно редко. Наиболее частыми осложнениями являются образование гематомы и тромбоз артерии.

Профилактика и лечение тромбофлебитов. У животных, находящихся в тяжелом состоянии в условиях ограниченной подвижности, достаточно часто возникают такие осложнения, как тромбофлебиты периферических вен с возможным последующим развитием тромбоэмболии легочной артерии, мелких легочных артерий или артерий мозга с соответствующей клиникой (вплоть до внезапной гибели). Развитие этих осложнений связано с ограничением подвижности, дегидратацией, нарушением вязкости крови, коагулопатией. Профилактикой является внутривенная инфузия изотонических растворов (следует стараться избегать введения гипертонических растворов, а также препаратов, усиливающих коагуляцию крови (!)); применение спиртовых компрессов на конечности в местах внутривенных введений растворов; ранняя двигательная активность, массаж конечностей; применение гепариновой мази местно и подкожное введение гепарина из расчета 100 ЕД./КГ дважды в сутки в течение 3-4 дней с последующим оральным введением аспирина 0,01 г/кг с пищей 2-3 раза в день.

10.2. Пункция перикарда и плевральной полости

Пункция перикарда осуществляется при тампонаде сердца, травматическом гемо пер и кардите, массивном экссудативном перикардите.

Пункция перикарда осуществляется в положении животного на спине, желательно после седирования. Место прокола находится в углу между реберной дугой и мечевидным отростком. После обезболивания места вкола 0,5% раствором новокаина толстую пункционную иглу направляют слегка медиально в саггитальной плоскости и под углом 45° — во фронтальной на глубину от 2 до 5 см, предпосылая проведению иглы новокаин до ощущения легкого сопротивления перикарда; при прокалывании последнего получают содержимое сердечной сумки (Рис.25). В тяжелых случаях гнойного перикардита возможна катетеризация перикарда по методике, сходной с катетеризацией по Сельдингеру. Кроме того, пункцию перикарда можно осуществлять в 4-м межреберье в месте перехода костной части ребра в хрящевую.

Рис.25. Схематическое изображение пункции перикарда. а — вид сверху; 6 — вид сбоку.

При пункции перикарда возможны ранения сердца (по игле толчкообразно выделяется кровь); повреждение коронарных артерий, что может привести к остановке сердца или последующему инфаркту; пневмоторакс, ранение органов брюшной полости при диафрагмальной грыже.

Плевральная пункция осуществляется при травматическом гемо- или пневмотораксе, экссудативном напряженном плеврите, сопровождающемся легочной недостаточностью.

Плевральную пункцию производят в 7-8-м межреберье по линии плечелопаточного сустава. При пункции сдвигают кожу на 1-2 см; иглой, надетой на шприц, прокалывают кожу и мышцы по переднему краю нижележащего ребра (во избежание ранения межреберной артерии) и вводят иглу на 3-4 см. При наличии пневмоторакса при натягивании плунжера шприца поршень не возвращается в исходное положение. В шприце могут быть следы крови или гноя. В случае необходимости эвакуации воздуха из плевральной полости на толстую иглу надевается резиновая трубка и герметизируется в месте соединения. После плевральной пункции содержимое ее эвакуируется активно (Рис.26) шприцем Жанэ (при этом периодически пережимают трубку зажимом) или пассивно по Бюлау (Рис.27).

Рис.26. Пункция плевральной полости. 1 — легкие; 2 — воздух.

Рис.27. Дренирование но Бюлау. 1 — трубка; 2 — резиновый напальчник; 3 — распорка (спичка); 4 — разрез в напальчнике; 5 — клапан; б — воздух.

Дренирование по Бюлау проводится с помощью длинной трубки, на одном конце которой находится игла, а на другом — клапан. Клапан изготавливается из резинового напальчника, отверстие которого привязывается на трубку, а конец разрезается на 1,5-2 см В области разреза можно установить распорку (спичку) для лучшей работы клапана. Клапан опускают в сосуд с фурацилином При вдохе излишки воздуха из плевральной полости выделяются через клапан.

При необходимости длительного дренирования плевральной полости, особенно при закрытых повреждениях груди, разрыве легкого прибегают к торакоцентезу. Торакоцентез осуществляется с помощью троакара, просвет которого должен быть достаточно широким, чтобы через него провести дренажную трубку. После обезболивания межреберного промежутка грудная стенка прокалывается троакаром, стилет извлекается, и в плевральную полость вводится перфорированная дренажная трубка на глубину 10—15 см, которая затем герметично подшивается к коже грудной стенки.

При отсутствии троакара торакоцентез осуществляют следующим образом: рассекают кожу в области грудной стенки на расстоянии 2-3 см;

кожу с раневым отверстием сдвигают на 2-2,5 см, чтобы рана находилась над передним краем нижележащего ребра (для предупреждения ранения межреберной артерии). После дополнительного обезболивания межреберного промежутка в плевральную полость резким колющим движением вводят зажим Бильрота с зажатой в нем дренажной трубкой. Трубку вводят на 10—15 см в плевральную полость, а зажим извлекают. Рану герметизируют швами, трубку подшивают к коже двумя шелковыми лигатурами (Рис 28). Содержимое плевральной полости эвакуируют активно с помощью шприца Жанэ, а затем переводят на дренирование по Бюлау.

Рис.28. Выполнение торакоцентеза при помощи зажима Бильрота.

10.3. Туалет трахеи и бронхов

Необходимость в проведении туалета трахеобронхиального дерева возникает в случае аспирации различных жидкостей в бронхи (особенно желудочного содержимого) и развития аспирационного синдрома, при тяжелой пневмонии, абсцессе легкого.

При развитии аспирационного синдрома, после седирования животного, производят интубацию трахеи, и через интубационную трубку вводят полихлорвиниловый дренаж с торцевым и одним боковым отверстием. Через дренаж инсталлируют изотонический раствор натрия хлорида, антибиотики, глюкокортикоиды, что разжижает мокроту и стимулирует кашель; после этого электроотсосом эвакуируют содержимое трахеи. Дренаж периодически промывают фурацилином, для сохранения его проходимости. Активную аспирацию проводят до прекращения поступления мокроты, гноя или других агрессивных жидкостей. При этой манипуляции возможно травмирование слизистой трахеи (при грубых манипуляциях) с возникновением кровотечения, развитие ларингоспазма.

При тяжелых хронических процессах в легких необходимо увлажнять дыхательные пути введением жидкостей внутрь (per os) или парентерально в сочетании с кислородными ингаляциями.

Для стимуляции кашля и лаважа трахеобронхиального дерева можно применить чрезкожную пункцию или микротрахеотомию. Пункцию трахеи осуществляют ниже перстневидного хряща через межкольцевую связку по средней линии в положении животного на спине. При введении иглы в трахею ощущается «провал», после которого в шприце появляется воздух при потягивании поршня. В трахею вводят антибиотики, муколитики. После их введения, как правило, возникает сильный кашлевой рефлекс, поэтому после введения лекарств иглу необходимо немедленно извлечь из трахеи. К пункциям прибегают при необходимости одно- или двукратного применения этой манипуляции. Если этого будет недостаточно, то через толстую иглу (после предварительного обезболивания) в трахею вводят катетер на глубину 3—7 см. Иглу извлекают, а катетер подшивают к коже Катетер извлекают после уменьшения количества мокроты. Уход за катетером осуществляется по общим правилам. Введение лекарственных препаратов осуществляется в зависимости от тяжести патологического процесса и может достигать 6—8 раз в сутки.

10.4. Интубация трахеи

К интубации трахеи прибегают при проведении эндотрахеального наркоза или при искусственной вентиляции легких.

Интубацию трахеи у животных можно осуществить без помощи ларингоскопа следующим образом: после седирования животного по методике, описанной выше, тесемками широко открывают пасть, языкодержателем фиксируют и вытягивают язык, длинным шпателем или корнцангом надавливают на корень языка у основания надгортанника, При этом открывается вход в трахею. Интубационная трубка соответствующего диаметра вводится между голосовыми связками в трахею без усилий, чтобы не травмировать слизистые оболочки гортани и трахеи (Рис.29).

Рис.29. Вид входа в трахею со стороны ротовой полости во время интубации. 1 — язык; 2 — корнцанг, 3 — надгортанник: 4 — голосовые связки; 5 — вход в трахею (голосовая щель); 6 — миндалины; 7 — небо.

Важно помнить, что изгиб трубки выпуклой стороной должен быть направлен в сторону верхней челюсти (Рис.30). Правильное положение трубки контролируется визуально (при нагнетании воздуха в трубку расширяется грудная клетка) и аускультативно (выслушиваются дыхательные шумы над всей поверхностью грудной клетки). При неправильном положении интубационной трубки визуально определяется вздутие живота в эпигастральной области, аускультативно прослушиваются булькающие проводниковые шумы над легкими и в эпигастрии. В этом случае необходимо немедленно извлечь трубку из пищевода и повторить интубацию более тщательно. Если интубационная трубка находится в трахее, то необходимо раздуть шприцом манжетку, или при отсутствии последней затампонировать гортань бинтом, смоченным раствором антисептика (фурацилин 1 : 5000, хлоргексидин 1 : 400). Эта мера предотвратит выход воздуха из трахеи и позволит эффективно осуществлять ИВЛ. После интубации трахеи трубку необходимо подключить к аппарату ИВЛ и начать ингаляцию кислородно-воздушной или газонаркотической смеси.

Рис.30. Схема интубации трахеи. 1 — интубационная трубка; 2 — надувная манжета.

Если проводится неингаляционный наркоз с сохранением спонтанного дыхания, необходимо увлажнить воздух, поступающий в легкие, для чего на наружное отверстие ингаляционной трубки надевается 2-3-х слойная марлевая салфетка, смоченная водой.

10.5. Трахеостомия

Один из наиболее эффективных способов обеспечения проходимости дыхательных путей в случаях, когда необходима длительная искусственная вентиляция легких (ИВЛ), если в результате травмы трахеи или отека гортани (например при отеке Квинке), а также при наличии инородного тела невозможна интубация трахеи. Кроме того, в некоторых экстренных ситуациях, сопровождающихся острой дыхательной недостаточностью и выраженной гипоксией, наличие интубационной трубки в трахее увеличивает протяженность так называемого «мертвого пространства», в котором скапливаются продукты газообмена, что существенно ухудшает ситуацию (Рис.31).

Рис.31. Схема «мертвого пространства»

В этих случаях также показана трахеостомия, позволяющая резко сократить путь кислорода к легким, а также тщательно санировать бронхиальное дерево, удалив из него кровь, слизь, мокроту и т.п.

Читайте также:  Человек гуляет с собакой без поводка

Технически трахеостомия выполняется с соблюдением всех правил асептики и антисептики. Как правило, состояние животного в случаях, когда необходима трахеостомия, не позволяет осуществить наркоз, поэтому эту операцию выполняют, используя местную анестезию. В положении животного на спине продольным срединным разрезом над трахеей рассекают кожу и подлежащие ткани до трахеи. Затем острым скальпелем прокалывают трахею так, чтобы одновременно проколоть, а не отодвинуть ее слизистую, далее — одним движением рассекают II и III кольца трахеи, и в образовавшееся отверстие вводят трахеостомическую трубку соответствующего диаметра. Лучше всего использовать специальные двойные пластмассовые трубки; при отсутствии последних можно использовать любую трубку подходящего диаметра Рану зашивают и дренируют перчаточной полоской. Трубку фиксируют к коже отдельными прошивными лигатурами. Трубку дополнительно фиксируют марлевой повязкой, а для увлажнения воздуха в трахею периодически вводят изотонический раствор натрия хлорида, или подвязывают к наружному концу трахеостомической трубки увлажненную марлевую салфетку. Следует помнить, что трахеостома требует тщательного ухода, как и любая хирургическая рана. Устранение трахеостомы целесообразно осуществлять постепенно, заменяя трубку большего диаметра на меньшую.

10.6. Длительная катетеризация мочевого пузыря

Достаточно ответственная манипуляция, необходимость в которой возникает при острой почечной недостаточности, переломах таза, политравме, сопровождающейся разрывом мочевого пузыря; при длительных оперативных вмешательствах, когда необходим контроль за выделительной функцией почек; при заболеваниях, сопровождающихся нарушением функции тазовых органов; при тяжелых состояниях животных, связанных с заболеваниями любой этиологии, при которых животные в течение нескольких дней могут находиться в коматозном или близком к этому состоянии. Длительная катетеризация мочевого пузыря позволяет не только осуществлять постоянный контроль за выделительной функцией почек, но и облегчить гигиенический уход за животным в этот период. Катетеризация мочевого пузыря осуществляется с соблюдением правил асептики (используется стерильный катетер, перед введением которого обязательно производят тщательный туалет наружных половых органов и области уретры). Лучше всего для этих целей использовать мягкие катетеры Пеццера или Фолея. При отсутствии последних можно использовать обычные резиновые катетеры. После введения катетера в мочевой пузырь, его фиксируют отдельными прошивными лигатурами, которые у самцов проводят через крайнюю плоть, а у самок — через срамные губы. Катетер дважды в сутки промывают растворами антисептиков (фурацилин 1 : 5000, хлоргексидин 1 : 400 и др.) в количестве, соответствующем объему мочевого пузыря. При операциях на мочевом пузыре этот объем не должен превышать 1/4-1/5 объема заполненного мочевого пузыря. С целью профилактики циститов, проводят терапию, включающую 5-НОК, фурагин, мочегонные травы Катетеризация может продолжаться 5—7 суток, в зависимости от патологического процесса При необходимости катетеризацию можно повторить через 2-3 суток после удаления катетера.

10.7. Декомпрессия, дренирование и промывание желудка и кишечника

Необходимость в экстренной декомпрессии желудка возникает при завороте последнего, когда невозможно ввести зонд в желудок. В этой ситуации только срочная декомпрессия желудка может существенно снизить проявление сердечно-легочной недостаточности, замедлить или даже прекратить развитие болевого шока и в конечном итоге позволит спасти животное. При этой патологии отмечается резкое вздутие живота с перкуторно определяемым тимпанитом над всей его поверхностью. Самая простая в этих случаях манипуляция — пункционная декомпрессия желудка. Для ее осуществления необходимо толстой иглой типа «Дюфо» по средней линии посередине между пупком и мечевидным отростком проколоть брюшную стенку и желудок, выпустив при этом воздух. Недостатком этого способа является то, что при невозможности немедленного оперативного вмешательства через некоторое время желудок вновь наполняется газами, что требует повторной пункции. При этом, во время операции не всегда есть возможность обнаружения места проколов стенки желудка. Более надежным способом декомпрессии при этом заболевании является троакарная декомпрессия с введением в полость желудка трубки через просвет троакара. Благодаря этому возможно промывание желудка, длительная его декомпрессия, проведение инфузионной коррекции нарушений гомеостаза до операции, а также безошибочное обнаружение места прокола стенки желудка во время оперативного вмешательства.

Дренирование и промывание желудка осуществляют перед операцией (для предупреждения аспирационного синдрома), при острых отравлениях, когда необходимо тщательное отмывание желудка от отравляющих агентов, в послеоперационном периоде (особенно при операциях на желудке), с целью энтерального питания. Перед операцией и при отравлениях промывание желудка осуществляют методом «сифона» Для этого через специальную дощечку с отверстием в центре диаметром 1-1,5 см проводят смазанный вазелином толстый желудочный зонд, постепенно проталкивая его вперед в момент глотательных движений животного (Рис.32). Ориентировочно длина зонда определяется по расстоянию от резцов до пупка, для чего зонд перед манипуляцией укладывается по наружной поверхности нижней челюсти, груди и живота; затем на зонд наносится метка, используемая в качестве ориентира при введении зонда в желудок.

Рис.32. Введение зонда в желудок животного.

Промывание желудка по типу «сифона» осуществляется следующим образом: к наружному концу зонда присоединяют стеклянную воронку, которую поднимают вверх над животным и заливают водой. Затем воронку опускают вниз, добиваясь эвакуации содержимого желудка. При этом стараются, чтобы воронка была постоянно заполнена водой и в желудок не попадал воздух. Осуществляя маятникообразные движения вверх-вниз 4-5 раз добиваются хорошего отмывания складок слизистой оболочки желудка. Затем промывные воды сливают, и процедуру повторяют сначала до тех пор, пока они не станут чистыми.

С целью интраоперационной декомпрессии желудка и предупреждения аспирационного синдрома зонд после этой манипуляции оставляют до конца операции. При необходимости послеоперационного длительного дренирования желудка (для декомпрессии, промывания, энтерального питания и т.д.) во время наркоза через носовой ход проводят тонкую трубку соответствующего диаметра в ротовую полость, откуда ее корнцангом вводят в пищевод и проводят в желудок. Такая манипуляция не сложна и не требует каких-либо особых навыков. Конец зонда фиксируется прошивной лигатурой к мочке носа.

К сожалению, у некоторых животных с легко возбудимой психикой в послеоперационном периоде зонд может вызвать резко негативную реакцию с попыткой его извлечь. В таких ситуациях рекомендуется закапывать носовой ход дикаином или другими местными анестетиками, а также инсталлировать анестетики в ротовую полость. Как правило, через 24—48 ч животные привыкают к неприятным ощущениям и не делают попыток извлечь зонд. Такой способ проведения зонда обеспечивает длительную декомпрессию желудка, дает возможность проведения энтерального питания животного на протяжении 5—7 дней.

Интубация кишечника осуществляется во время оперативного вмешательства по поводу разлитого фибринозно-гнойного перитонита, при острой кишечной непроходимости, когда отмечается резкое вздутие кишечника и перерастяжение его стенок газами и кишечным содержимым. Необходимость в этой манипуляции возрастает при неуверенности хирурга в жизнеспособности тканей кишечной стенки, и возможности развития несостоятельности швов после энтеротомии (при извлечении инородных тел), или в области анастомоза (при резекции кишки). Как показывает наш опыт, наиболее целесообразно производить интубацию кишечника по закрытому типу — трансанальным способом. Интубации кишечника должно предшествовать введение 0,25% раствора новокаина в количестве 1-2 мл/кг в корень брыжейки. После этого помощник вводит в прямую кишку трансанально толстую изогнутую трубку (для этих целей можно использовать интубационную трубку большого диаметра) и по ней проводит перфорированную ПХВ-трубку в толстую кишку. Хирург через стенку толстой кишки захватывает ее и «нанизывающими» движениями двумя руками постепенно проводит интубационную трубку по просвету кишечника до необходимого места (на 50—60 см дальше места энтеротомии). Как правило, эта манипуляция осуществляется достаточно быстро и легко Наибольшие трудности возникают при проведении трубки из толстой кишки в тонкую, что связано с анатомическим строением перехода тонкой кишки в толстую.

Наличие в этой области так называемой «Баугиниевой заслонки», являющейся своеобразным защитным барьером для проникновения толстокишечного содержимого с соответствующей микрофлорой в просвет тонкой кишки, не позволяет сразу же провести зонд в просвет тонкой кишки, однако при некоторых навыках эта манипуляция осуществляется достаточно быстро. Дальнейшее продвижение зонда осуществляется просто. Схема трансанальнои интубации кишечника показана на Рис.33.

Наличие зонда в тонком кишечнике позволяет проводить декомпрессию кишки, избежать несостоятельности швов анастомоза, осуществить профилактику послеоперационного пареза, при необходимости промывать кишечник с целью снижения интоксикации, проводить энтеральное питание Наружный конец зонда подшивается к перианальнои складке, после чего на него надевается полиэтиленовый мешок для сбора кишечного содержимого. В послеоперационном периоде зонд промывается минеральной водой без газа 2-3 раза в течение суток. Промывание кишечника продолжают в течение двух-трех дней до восстановления нормальной перистальтики и появления обычного кишечного содержимого из трубки. Удаление зонда производят осторожным медленным потягиванием за его конец.

Рис.33. Схема трансанальной интубации кишечника. 1 — тонкая кишка (терминальный отдел); 2 — интубационный кишечный зонд; 3 — линия анастомоза, 4 — «Баугиниева заслонка»; 5 — слепая кишка; 6 — толстая кишка; 7 — анус

10.8. Тампонада носовых ходов

В анестезиологической практике нередко встречаются повреждения носовых ходов (травмирование слизистой при грубых манипуляциях, ЧМТ, различные заболевания), сопровождающиеся сильным кровотечением.

В случае невозможности остановить кровотечение при помощи медикаментов или передней тампонады прибегают к задней тампонаде носовых ходов. Для этого животное вводят в наркоз, интубируют (во избежание обтурации трахеи кровью и сгустками), через носовые ходы до надгортанника проводят тонкий катетер, по длине в 3 раза превышающий длину носовых ходов. Здесь его захватывают корнцангом и выводят наружу. К концу катетера прочно фиксируют полоску марли (тампон) соответствующей толщины, смоченный 3% раствором перекиси водорода. Подтягивая второй конец катетера, постепенно вводят в носовые ходы марлевый тампон, другой его конец фиксируют снаружи. При необходимости заднюю тампонаду дополняют передней. Обычно достаточно 1-2 часов для остановки кровотечения, но при необходимости тампоны можно оставлять в носовых ходах до 24 часов.

Источник